Nature Cell Biology:多组学揭示人血浆细胞外囊泡的核心蛋白质与脂质特征

2025年11月,澳大利亚贝克心脏与糖尿病研究所等单位的相关研究人员在《Nature Cell Biology》(IF: 19.5)上发表了题为“Multi-omics identify hallmark protein and  lipid features of small extracellular vesicles  circulating in human plasma”的研究论文,运用多组学方法,构建了血浆中细胞外囊泡(EVs)的蛋白质组合脂质组图谱,并提供了能够精确区分EV和非EV颗粒的生物标志物。

  亮点概述:

  • 首次通过多组学技术系统解析人血浆EV的核心蛋白组(182 种蛋白)和脂质组(52 种脂质)特征
  • 鉴定出42种非EV颗粒特异性蛋白和114种非EV颗粒特异性脂质,明确EV与非EV颗粒的分子差异
  • ADAM10和 PS(36:1)与CE(18:0)的比例组合可作为人血浆中EV的高度保守和可靠的生物标志物
  • 开发开源网络工具,实现EV蛋白组和脂质组数据的便捷查询与分析,助力领域研究标准化

  研究背景:

EVs是细胞膜包裹形成的纳米级颗粒(直径 30-1000 nm),可释放到细胞外环境中,通过转运蛋白质、脂质、核酸和代谢物等生物活性物质介导细胞间通讯,在生理和病理过程中发挥多种功能。EVs广泛存在于人循环系统中,参与免疫调节、器官间串扰、组织稳态维持等关键生命过程,作为微创液体活检的潜在载体,EVs 在疾病诊断和治疗反应实时监测中具有重要应用前景。

尽管EVs的生物学和生物医学意义重大,但循环EVs的研究仍面临巨大挑战。血浆中存在大量非EV成分(如脂蛋白颗粒、可溶性蛋白、补体蛋白和免疫球蛋白),其数量比EVs高出6-7个数量级,这些成分易与EVs共纯化,导致质谱分析主要局限于高丰度血浆蛋白或脂蛋白相关脂质,难以获得完整、低覆盖度的数据。目前,国际EV领域正致力于开发和优化血浆EV分离方法,以精准定义其分子图谱。此外,源于细胞培养系统的现有EV标志物在人类样本中的保守性有限,需要明确人类循环EV的核心分子特征,为大规模人群研究、EV纯化与表征技术改进及国际EV研究指南完善提供支持

 

研究团队首先采用高分辨率碘克沙醇密度梯度分离(DGS)技术从人血浆中分离小EVs,通过蛋白质印迹、低温电子显微镜、纳米颗粒追踪分析等多种生化和生物物理方法验证EV富集效果。结果显示,DGS 技术可将血浆中大部分高丰度成分(如白蛋白、载脂蛋白)分离至1-5组分,而EV标志性分子CD63则集中在6-8组分(浮力密度约 1.09 g/ml),该分辨率是单纯超速离心(p100K)无法实现的。分离得到的EV颗粒(pEVs)形态完整,为膜包裹的球形囊泡,平均直径 220.4 nm,尺寸范围 30-300 nm,呈净负电荷,与非EV颗粒(pDGS.LD)在形态和理化性质上存在显著差异。

为构建循环EVs的蛋白质组图谱,研究团队对38份人血浆样本的pEV进行质谱分析,并与 pDGS.LD、p100K和未处理血浆(统称 NonEVs,n=42)进行对比。在严格的肽段和蛋白质鉴定标准下(1% 假发现率),共量化pEV中的4631种蛋白质和 NonEV中的 1678 种蛋白质,pEV蛋白质组覆盖了低丰度循环蛋白,且与NonEV蛋白质组存在显著差异。通过出现频率分析和差异丰度分析,鉴定出259种在所有pEV样本中普遍量化的蛋白(1 类蛋白),其中182种蛋白在pEV中显著富集(称为pEV蛋白特征),这些蛋白主要富集于小EV相关通路(如肌动蛋白细胞骨架调控、内吞作用)和EV生物发生相关蛋白。同时,鉴定出42种非EV颗粒特异性蛋白特征,主要富集于补体和凝血通路及高丰度血浆蛋白。pEVs蛋白特征在已发表的循环EV蛋白质组和不同EV亚群(CD81、CD63、CD9)中具有高度保守性,且在独立外部队列(AusDiab)中得到验证,177/182 种pEV蛋白特征被检测到,87.4%的pEV蛋白特征显著富集,显示出良好的可重复性。通过膜不透性生物素标记结合质谱分析,研究团队鉴定出151种pEV表面可及蛋白(包括 CD44、CD47、整合素家族成员等),构成循环 EV 的表面组,为基于抗体的 EV 捕获提供了靶点。此外,研究还发现pEV蛋白特征在冠状动脉钙化(CAC)患者和健康人群中均高度保守,同时能捕捉到疾病相关的蛋白表达变化,凸显其作为pEV研究参考标准的潜力。

绘制人血浆中循环EVs的核心蛋白质组

在脂质组分析方面,研究团队采用高通量靶向脂质组学平台,检测了3类脂质(糖鞘脂、鞘脂、固醇)中的40个脂质类别、829种脂质。主成分分析显示pEVs和NonEVs 的脂质组存在明显聚类分离,pEVs和体外EVs中高丰度脂质包括胆固醇(COH)、磷脂酰胆碱(PC)、磷脂酰乙醇胺(PE)和鞘磷脂(SM),这些都是真核细胞膜的主要结构成分。超过30%的检测脂质 pEVs和NonEVs之间存在差异丰度,pEVs中富集的脂质(如二氢神经酰胺、三己糖神经酰胺、二己糖神经酰胺)与EV生物发生相关,且在体外EVs 中同样富集;而 NonEVs中富集的脂质(如胆固醇酯、甘油三酯、辅酶 Q10)主要是脂蛋白颗粒的成分。通过 K-均值聚类分析,鉴定出52种pEV脂质特征(c4簇)和114种非EV脂质特征(c1簇),pEV脂质特征在脂质本体论分析中与双层膜、质膜等EV相关术语富集,且在 DGS 6-7组分中高度富集,在独立队列和原代细胞来源EVs中也表现出良好的保守性和可重复性。

循环EVs的脂质组景观

研究人员进一步通过机器学习算法(朴素贝叶斯算法)验证,pEV和NonEV蛋白特征面板可区分pEV与非EV颗粒,准确率达100%;递归特征消除(RFE)分析发现 ADAM10是关键区分特征,其在pEVs和体外培养细胞来源EVs中特异性高表达,相对丰度可达样本中位数强度的7.5倍,可单独用于pEV与非EV颗粒的区分。此外,pEV和 NonEV脂质特征面板也可区分EV与非EV颗粒,准确率达97%;RFE 分析发现PS (36:1)(EV脂质特征)和 CE (18:0)(非EV脂质特征)是关键标记物。PS (36:1) 在 pEVs 和体外 EVs 中均为高丰度脂质,其与CE (18:0) 的相对丰度比可作为 EV 纯度评估的指标。

ADAM10蛋白和PS脂质是人类循环EVs的生物标志物

最后,研究团队开发了开源R/Shiny网络工具(evmap.shinyapps.io/evmap/),方便研究人员查询目标分子 pEVs和NonEVs中的表达情况,分析EV蛋白的表面可及性、构建网络分析、检索相关通路等,为EV领域研究提供了便捷的数据资源平台。

循环EVs的标志性分子特征

总之,该研究鉴定了人体内循环EVs的核心蛋白和脂质成分,并提出这些成分是循环EVs的“标志性分子特征”,为EVs研究领域提供了宝贵的资源。

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